Establishment of bovine nasal epithelial cell cultures and infection with Bovine Viral Diarrhea Virus and Bovine Herpesvirus 1
Das bovine respiratorisch Syndrom ist eine weltweit verbreitete, wirtschaftlich bedeutende Erkrankung des Rindes. Der multifaktorielle Krankheitskomplex entsteht durch eine Kombination aus viralen und bakteriellen Erregern, einem geschwächten Immunsystem und externen Faktoren. Das Bovine Virusdiarrhoe-Virus (BVDV) und das Bovine Herpesvirus 1 (BHV-1) spielen eine wichtige Rolle in der Entstehung der Krankheit. Die Wechselwirkungen von Erregern in den oberen Atemwegen, wie die zwischen BVDV und BHV-1, sind entscheidend für den frühen Krankheitsverlauf. Primäre Zellkulturmodelle der oberen Atemwege des Rindes sind daher ein wichtiges und limitiert erforschtes und etabliertes Instrument zur Untersuchung dieser Wechselwirkungen. In der vorliegenden Studie wurden konfluente, polarisierte primäre bovine Nasenepithelzell-Filterkulturen verwendet, um die Infektionsdynamik und die Wechselwirkungen von BVDV und BHV-1 in den oberen Atemwegen von Rindern zu untersuchen. Das Ziel der Studie ist es fundamentale Aspekte von BVDV und BHV-1 Infektionen in der nasalen Schleimhaut zu charakterisieren, inklusive Virusvermehrung, Virusausscheidung. und den Effekt auf die Epithelzellbarriere. Die primären Nasenepithelzell-Filterkulturen bestehen aus Basalzellen, welche für eine BVDV-Infektion von der apikalen und basolateralen Seite empfänglich waren. Ergebnisse zeigen eine progressive Virusgenomreplikation und apikale Virion-Ausscheidung ohne Beeinflussung der Barrierefunktion. Die Virusreplikation und Freisetzung von BVDV wurde durch den Infektionsweg nicht beeinflusst. Eine BHV-1-Infektion induzierte schnelle zellschädigende Effekte, was zu einem Verlust der Barrierefunktion führte. Die apikale Freisetzung von BHV-1 und die virale Genomreplikation waren robust, und basolaterale Titer wurden erst nach einem Verlust der epithelialen Barrierefunktion nachgewiesen, wahrscheinlich aufgrund passiver Diffusion. Superinfektionsexperimente zeigten, dass eine vorliegende BVDV-Infektion keinen Einfluss auf die Replikation oder Virusausscheidung einer nachfolgenden BHV-1 Infektion hatte. Die Schädigung der epithelialen Barriere durch die Zellschädigenden Effekte von BHV-1 wurde ebenfalls nicht beeinflusst. Das etablierte Primärzellkultur-Modell bietet eine physiologisch relevante Plattform zur Untersuchung grundlegender und komplexer Virus-Wirt-Interaktionen in den oberen Atemwegen von Rindern. Seine nachgewiesene Anwendbarkeit für Mono- und Ko-infektionen macht es für zukünftige Untersuchungen zu respiratorischen Pathogenen, der Dynamik viraler Koinfektionen und Interventionsstrategien bestens geeignet. Über das bovine respiratorische Syndrom hinaus könnte dieses Modell angepasst und entwickelt werden, um andere luftübertragene Rinderpathogene zu untersuchen, Impfstoffkandidaten zu evaluieren und antivirale Ansätze unter kontrollierten In-vitro-Bedingungen zu testen.
The bovine respiratory disease complex (BRDC) is a globally prevalent and economically significant disease affecting cattle. This multifactorial syndrome arises from a combination of viral and bacterial pathogens, a compromised immune system, and various external factors. Bovine viral diarrhea virus (BVDV) and bovine herpesvirus-1 (BHV-1) are among the major viral contributors to BRDC. Interactions between pathogens in the upper respiratory tract (URT), particularly BVDV and BHV-1, play a crucial role in disease progression. Despite the considerable potential for research in this area, primary cell culture models of the URT, critical tools for investigating these interactions, remain limited. In the present study, confluent, polarized primary bovine nasal epithelial cell (BNEC) submerged tissue cultures (STC) were used to investigate the infection dynamics and interactions of BVDV and BHV-1 in the URT of cattle. The study aimed to characterize fundamental aspects of BVDV and BHV-1 infections in the nasal mucosa, including replication kinetics, virion release, and the effects on epithelial barrier integrity. BNEC STC are comprised of epithelial basal cells, which were permissive to BVDV infection from the apical and basolateral side, showing progressive viral genome replication and apical virion shedding, while maintaining barrier function. Viral replication and shedding of BVDV were not affected by the infection route. BHV-1 infection induced rapid cytopathic effects in BNEC, resulting in a loss of barrier function. Apical virion shedding and viral genome replication were robust, and basolateral titers were detected only after a loss of the epithelial barrier function, likely due to passive diffusion. Superinfection experiments revealed that prior BVDV infection did not influence BHV-1 replication, viral shedding, or the disruption of the epithelial barrier caused by cytopathic effect of BHV-1. The established BNEC STC model provides a physiologically relevant platform to investigate fundamental and complex virus-host interactions in the bovine URT. Its proven applicability to mono- and coinfections makes it highly suited for future investigations into BRDC-associated pathogens, viral co-infection dynamics, and intervention strategies. Beyond BRDC, this model could be adapted and developed to study other airborne bovine pathogens, evaluate vaccine candidates, and test antiviral approaches under controlled in vitro conditions.
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