Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover (TiHo)

Untersuchungen zum Endoparasitenbefall bei afrikanischen Wildwiederkäuern unter Berücksichtigung der Weideinfestation im Serengeti-Park Hodenhagen

Koch, Susanne

Faecal and pasture sampling over a period of 13 months were used to estimate the prevalence of endoparasitic infections in wild African ruminants of the Serengeti Wild Animal Park in Hodenhagen in Lower-Saxony, approximately 60 km north of Hannover. 1130 faecal samples of 10 different wild African ruminant species were collected in three different enclosures: Africa I (18,8 acres) with giraffes, elands, gemsboks, common waterbucks, sable antelopes and impalas, Africa II (6,4 acres) with nyalas and Africa III (27,4 acres) with defassa waterbucks, roan antelopes and lechwe. By using McMaster flotation technique, larval migration technique and culture of larvae the following results were found: Giraffe: Strongyle nematode eggs were detected in 38,4% of the 159 faecal samples. Eggs of Nematodirus, Trichuris and Capillaria sp. were found in 5,0 to 7,5% of the samples. From 6,9% of the samples larvae of Dictyocaulus sp. migrated. Ostertagia and Trichostrongylus were found in 91,2 and 37,1% of larval cultures, respectively and larvae of Cooperia, Nematodirus and Strongyloides sp. more rarely. Eland: Eimeria oocysts were found in 44,8% of the samples. Strongyle eggs and eggs of Nematodirus, Trichuris and Capillaria sp. were found in 8,4-21,0% of the samples. In larval cultures, Ostertagia, Strongyloides and Trichostrongylus sp. were found in 62,9, 9,1% and 2,1%, respectively. Gemsbok: With strongyle eggs in 78,2% of the samples, gemsbok had the highest value of this kind of all examined ruminant species. Eimeria oocysts and eggs of other parasites were found in 25,5 and 0,9-5,5% of the samples respectively. Dictyocaulus larvae migrated from 28,3% of the samples. Ostertagia, Trichostrongylus and Strongyloides sp. were found in 81,1, 49,1 and 1,9% of larval cultures, respectively. Common waterbuck: Eimeria oocysts, strongyle eggs and eggs of other nematodes (Nematodirus, Trichuris and Capillaria) were found in 55,7, 12,3 and <3% of the samples, respectively. Ostertagia, Trichostrongylus and other nematodes (Nematodirus and Strongyloides) were found in 41,8, 42,6 and <4% of larval cultures, respectively. Sable antelope: Eggs of strongyle and other nematode sp. were found in 36,0 and 6% of the samples, respectively. Ostertagia and Trichostrongylus sp. were found in 60,4 and 2,9% of larval cultures, respectively. Impala: Ostertagia and Trichostrongylus sp. were detected in 22,2 and 3,7% of larval cultures, respectively. All the other examination methods yielded negative results. Nyala: Eimeria oocysts were detected in 21,6% of the samples. Egg numbers of helminth genera were below the detection limit. Ostertagia and Trichostrongylus sp. were found in 3,4 and 2,3% of larval cultures, respectively. Defassa waterbuck: Eimeria oocysts were found in 50% of the samples. Strongyle and Capillaria eggs were found in 13,3 and 8,9% of the samples. Trichostrongylus and Ostertagia sp. were found in 66,7 and 7,8% of larval cultures, respectively. Roan antelope: Eggs of strongyle sp. and other genera were found in 26,2 and up to 10,7% of the samples, respectively. Trichostrongylus, Ostertagia, Cooperia and Oesophagostomum sp. were found in 81, 75, 41,7 and 7,1% of larval cultures, respectively. Lechwe: Eimeria oocysts and eggs of helminth genera were found in 71,4 and up to 8,3% of the samples, respectively. Trichostrongylus and Ostertagia sp. were found 34,5 and 5,4%, respectively, in larval cultures. Pasture samples: In total 57 pasture samples were examined. In enclosure Africa I, larvae of Ostertagia, Trichostrongylus, Nematodirus, Cooperia and Oesophagostomum, respectively, were found in 85,7, 61,9, 66,7, 47,6 and 4,8% of 21 pasture samples. In enclosure Africa II, larvae of Ostertagia, Trichostrongylus and Nematodirus, respectively, were found in 22,2, 5,6 and 16,7% of 18 pasture samples. In enclosure Africa III, larvae of Ostertagia and Trichostrongylus sp., respectively, were found in 22,2 and 38,9% of 18 pasture samples. The genus Trichuris was important especially in giraffes, elands, sable antelopes and roan antelopes (without seasonal increase). Ivermectin administration failed to eliminate Trichuris sp. in one sable antelope. The genus Capillaria was found in all examined animal species except impala and nyala. (mostly without seasonal increase). The data confirmed the statement of ROTH (1968) that Trichuridae are more prevalent (and cestodes and trematodes less prevalent) in the zoo than in the original habitats of the animals. Dictyocaulus sp. were detected in gemsboks, elands and giraffes. Gemsboks, especially, showed a typical increase of the larval excretion towards autumn for this parasite genus. An adult female gemsbok seemed unable to form a stable immunity. The genus Nematodirus was found much earlier in the year (in early May) in pasture samples than all other genera. It is possibly partly the species Nematodirus battus, which needs a cold phase before hatching. Higher counts of strongyle nematode eggs and oocysts of Eimeria were detected in most of the examined animal species during the winter housing period. Only in sable and roan antelopes did egg output increase in summer. A literature search suggests that this may be the first report of the following endoparasites under zoo or enclosure conditions: Dictyocaulus sp. in eland and gemsbok, Capillaria sp. in lechwe and sable antelope; Eimeria sp. in sable antelope, Nematodirus sp. in common waterbuck, Oesophagostomum sp. in roan antelope, Ostertagia sp. in impala, and Trichostrongylus sp. in common waterbuck, defassa waterbuck, impala and lechwe. Grazing husbandry in the safari park possibly maintained the incidence of Oesophagostomum, Dictyocaulus, Ostertagia and Nematodirus sp. . The genus Trichostrongylus, which the literature reports as occurring approximately as often in zoos as in spacious safari parks, is an exception. Even daily cleaning of enclosures cannot prevent parasitic infections completely and so it also cannot prevent a host-parasite-interaction, which is important to form immunity. Relations between weather conditions and the changes of larval density on herbage were noticeable. However, depending on the animal species, increases of egg outputs occurred (even within enclosures) at very different times of the year. Also, the animal species showed high differences as regards the extent of egg output. Gemsboks excreted the highest numbers of strongyle nematode eggs. Eimeria oocysts were found especially in the waterbuck samples but the statistical significance of that observation is questionable because of the small number of samples. Some animals excreted strongyle nematode eggs more than three weeks after anthelminthic treatment but no larvae developed. Other animals showed higher counts of oocysts of Eimeria sp. . A change in the larval cultures followed anthelminthic treatment of roan antelopes: Ostertagia sp. temporarily reached a higher percentage than Trichostrongylus sp. . The partly difficult differentiation of the parasites´ genus and the corresponding risk of unnoticed import of exotic parasites were discussed with the advice to organize a strict quarantine. To improve parasite control it was recommended to perform a second routine anthelmintic treatment at the end of the winter housing period, to move the time of increasing pasture contamination with worm eggs to the latest possible time of the year.

Im Serengeti-Park Hodenhagen wurden 1130 Kotproben von 10 verschiedenen afrikanischen Wildwiederkäuerarten in 3 verschiedenen Gehegen gesammelt: Gehege Afrika I (7,6 ha) mit Giraffen, Elenantilopen, Oryxantilopen, Ellipsen-Wasserböcken, Rappenantilopen und Impalas, Gehege Afrika II (2,6 ha) mit Nyalas und Gehege Afrika III (11,1ha) mit Defassa-Wasserböcken, Pferdeantilopen und Litschi-Moorantilopen. Die Untersuchungen mittels Flotationsverfahren nach McMaster, Auswanderverfahren und Larvenkultur brachten folgende Ergebnisse: Giraffe: In 38,4 % der 159 Proben wurden Magen-Darm-Strongyliden-Eier nachgewiesen. Nematodirus-, Trichuris-, und Capillaria-Eier kamen in 5,0 bis 7,5 % der Proben vor. Aus 6,9 % der Proben wanderten Dictyocaulus-Larven aus. In der Larvenkultur kamen Ostertagia sp. mit 91,2 % der Proben am häufigsten vor, gefolgt von Trichostrongylus-Larven mit 37,1 % und Cooperia-, Nematodirus- und Strongyloides-Larven in geringerer Häufigkeit. Elenantilope: Am häufigsten wurden Eimeria-Oozysten nachgewiesen (44,8 % der Proben). MDS-, Nematodirus-, Trichuris- und Capillaria-Eier erreichten zwischen 8,4 und 21,0 %. In den Larvenkulturen wurden am häufigsten Ostertagia-Larven gefunden (62,9% der Proben), Trichostrongylus- und Strongyloides-Larven erreichten 2,1 bzw. 9,1 %. Oryxantilope: Diese Tierart erreichte mit MDS-Eiern in 78,2 % der Proben den höchsten Wert aller untersuchten Tierarten. Eimeria sp. kamen in 25,5 % der Proben vor, Eier der anderen Parasitenarten nur zu 0,9 bis 5,5 %. Dictyocaulus-Larven wanderten aus 28,3 % der Proben aus. In 81,1 % der Larvenkulturen kamen Ostertagia-Larven vor, Trichostrongylus- und Strongyloides-Larven erreichten 49,1 % bzw. 1,9 %. Ellipsen-Wasserbock: In 55,7 % der Proben wurden Eimeria-Oozysten nachgewiesen, MDS-Eier dagegen nur in 12,3 % der Proben. Nematodirus, Trichuris und Capillaria sp. erreichten Werte unter 3 %. Ostertagia- und Trichostrongylus-Larven kamen in einer ähnlich großen Zahl von Proben vor. (41,8 % bzw. 42,6 %). Nematodirus- und Strongyloides-Larven erreichten Werte unter 4 %. Rappenantilope: In 36,0 % der Proben kamen MDS-Eier vor. Die anderen Gattungen erreichten Werte unter 6 %. Ostertagia-Larven wurden in 60,4 % der Proben nachgewiesen, Trichostrongylus-Larven jedoch nur in 2,9 %. Impala: In 22,2 % der Larvenkulturen kamen Ostertagia-Larven vor, in 3,7 % Trichostrongylus-Larven. Alle anderen Verfahren brachten nur negative Ergebnisse. Nyala: Eimeria-Oozysten kamen in 21,6 % der Proben vor. Eier der anderen Gattungen erreichten keine zählbare Grenze. In 2,3 % bzw. 3,4 % der Larvenkulturen entwickelten sich Trichostrongylus- bzw. Ostertagia-Larven. Defassa-Wasserbock: In 50 % der Proben wurden Eimeria-Oozysten gezählt. MDS- bzw. Capillaria-Eier wurden in 13,3 % bzw. 8,9 % der Proben gezählt. Mit 66,7 % der Larvenkulturen kamen Trichostrongylus-Larven deutlich häufiger vor als Ostertagia-Larven (7,8 % der Proben). Pferdeantilope: MDS-Eier wurden in 26,2 % der Proben gezählt, Eier (bzw. Oozysten) anderer Gattungen in bis zu 10,7 % der Proben. Ostertagia-, Trichostrongylus- bzw. Cooperia-Larven kamen in 75 %, 81 % bzw. 41,7 % der Proben vor, Oesophagostomum sp. nur in 7,1 %. Litschi-Moorantilope: In 71,4 % der Proben kamen Eimeria-Oozysten vor. Eier der Helminthengattungen erreichten nicht mehr als 8,3 % (MDS). Mit 34,5 % der Larvenkulturen waren Trichostrongylus sp. häufiger vorhanden als Ostertagia sp. (5,4 %). Grasproben: Insgesamt wurden 57 Grasproben gesammelt und untersucht. Im Gehege Afrika 1 waren von den insgesamt 21 Grasproben in 18 Proben (=85,7 %) Ostertagia-Larven, in 13 (61,9 %) Trichostrongylus-Larven, in 14 (66,7 %) Nematodirus-Larven und in 10 (47,6%) Cooperia-Larven vorhanden. Nur in einer (4,8 %) der Proben kamen Oesophagostomum-Larven vor. Im Gehege Afrika 2 wurden in 4 von 18 Proben (22,2%) Ostertagia-Larven gezählt, in einer (5,6 %) Trichostrongylus- und in 3 Proben (16,7 %) Nematodirus-Larven. Im Gehege Afrika 3 waren ebenfalls in 4 von 18 Proben (22,2%) Ostertagia-Larven vorhanden. Trichostrongylus-Larven kamen jedoch in 7 Grasproben (38,9 %) vor. Eine wichtige Rolle spielte die Gattung Trichuris v.a. bei Giraffen, Elen-, Rappen- und Pferdeantilopen (ohne jahreszeitliche Häufung). Bei einer Rappenantilope erfolgte nach einer Ivermectin-Injektion keine vollständige Eliminierung von Trichuris. Die Gattung Capillaria kam bei allen Tierarten außer der Impala und der Nyala meist ohne jahreszeitliche Häufung vor. Die Aussage von ROTH (1968), dass im Zoo im Gegensatz zum Freiland mehr Trichuriden, jedoch weniger Trematoden und Cestoden vorkommen, konnte bestätigt werden. Dictyocaulus sp. kamen bei Oryx- und Elenantilopen, wie auch bei Giraffen vor. V.a. bei den Oryxantilopen erfolgte eine für diese Endoparasitengattung typische Steigerung der Larvenausscheidung zum Herbst hin. Ein weibliches Oryxantilopen-Alttier schien keine belastbare Immunität auszubilden. In Grasproben wurde die Gattung Nematodirus deutlich früher als alle anderen Gattungen bereits Anfang Mai nachgewiesen. Es könnte sich daher teilweise um die Art Nematodirus battus handeln, die vor dem Schlupf eine Kältephase benötigt. Bei den meisten Tierarten wurden erhöhte MDS-Eizahlen bzw. Eimeria-Oozysten-Zahlen im Winter bei Stallhaltung festgestellt. Nur bei Rappen- und Pferdeantilopen erfolgte die Steigerung im Sommerhalbjahr. Unter Berücksichtigung der vorliegenden Literatur erfolgten möglicherweise erstmalige Nachweise bestimmter Endoparasiten unter Gehegebedingungen bei Elenantilope (Dictyocaulus sp. ), Oryxantilope (Dictyocaulus sp.), Rappenantilope (Eimeria sp., Capillaria sp.), Pferdeantilope (Oesophagostomum sp.), Ellipsen-Wasserbock (Trichostrongylus sp., Nematodirus sp.), Defassa-Wasserbock (Trichostrongylus sp.), Litschi-Moorantilope (Trichostrongylus sp., Capillaria sp.) und Impala (Trichostrongylus sp., Ostertagia sp.). Das Auftreten der Gattungen Oesophagostomum, Dictyocaulus, Ostertagia und Nematodirus wurde möglicherweise durch die im Safaripark vorhandene Weidehaltung begünstigt. Eine Ausnahme bildete die Gattung Trichostrongylus, die laut Literatur in intensiver Zoohaltung, wie auch in weiträumiger Safariparkhaltung ähnlich häufig vorkam. Auch die tägliche Reinigung der Gehege kann also parasitäre Infektionen und damit eine zur Ausbildung einer Immunität wichtige Wirt-Parasit-Interaktion nicht vollständig verhindern. Zusammenhänge zwischen den Klimadaten und den Schwankungen der Larvenmengen im Weidegras waren erkennbar. Die Höhepunkte der Eiausscheidung erfolgten jedoch je nach Tierart (auch innerhalb eines Geheges) zu unterschiedlichen Zeitpunkten. Auch hinsichtlich der Höhe der Eiauscheidung gab es Unterschiede zwischen den Tierarten. Die Oryxantilopen waren die Hauptausscheider von Magen-Darm-Strongyliden-Eiern. Eimeria sp. traten v.a. bei Wasserbockarten auf. Jedoch konnte aufgrund der geringen Tierzahl kein statistisch signifikanter Unterschied zu den anderen Gattungsgruppen nachgewiesen werden. Mehr als 3 Wochen nach anthelminthischen Behandlungen wurden von verschiedenen Tierarten MDS-Eier ausgeschieden, aus denen sich unerklärlicherweise keine Larven entwickelten. Bei anderen Tieren wurden vermehrt Eimeria-Oozysten nachgewiesen. Bei den Pferdeantilopen erfolgte nach einer Entwurmung eine vorübergehende Verschiebung zugunsten von Ostertagia sp., nachdem vorher Trichostrongylus sp. den Hauptanteil der entwickelten Larven ausmachten. Die z.T. problematische Unterscheidung der Parasiten-Gattungen und das damit verbundene Risiko des unbemerkten Imports exotischer Parasitenarten wurden diskutiert mit dem Rat zu verschärfter Quarantäne. Zur Verbesserung der Parasitenkontrolle wurde empfohlen, eine zweite routinemäßige Entwurmung gegen Ende der Stallperiode durchzuführen, um die verstärkte Kontamination der Weiden im Jahresverlauf möglichst weit nach hinten zu verschieben.



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Koch, Susanne: Untersuchungen zum Endoparasitenbefall bei afrikanischen Wildwiederkäuern unter Berücksichtigung der Weideinfestation im Serengeti-Park Hodenhagen. Hannover 2005. Tierärztliche Hochschule.


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