Untersuchung der CO2-Euthanasie bei Labormäusen auf Tierschutzgerechtigkeit

Viele Tiere werden im Rahmen von Tierversuchen aber auch aus anderen Gründen getötet. Für Labormäuse ist die Tötung mit CO2 eine der gebräuchlichsten Methoden. Dennoch ist sie nicht unumstritten: Während nahezu alle Richtlinien und viele Autoren die Anwendung von CO2 gutheißen, sind einige Autoren von der aversiven Wirkung des Gases überzeugt. Ziel dieser Arbeit war es, die Methode der Kohlenstoffdioxid-Euthanasie bei Labormäusen auf ihre Tierschutzgerechtigkeit zu untersuchen und unter Zuhilfenahme eines strömungsphysikalischen Modells eine möglichst schonende Technik für die zwei gängigsten Käfigtypen in der Labormäusehaltung zu etablieren. 100 männliche Mäuse der Linie BALB/cByJIco wurden im Alter von 9 Wochen mit Kohlenstoffdioxid in ihren Heimatkäfigen getötet, in denen sie paarweise untergebracht waren. Für die Einleitung des Gases wurde ein speziell entwickelter Deckel eingesetzt. Jeweils 10 Tiere wurden mit den Flussraten 4l/min, 6l/min, 8l/min und 10l/min in einem Makrolon®-Käfig entweder des Typs III oder des Typs II lang getötet. Für den Käfigtyp III wurden zusätzlich die Flussraten 13l/min und 15l/min untersucht. Das Verhalten wurde auf Videoband aufgezeichnet und ausgewertet. Außerdem wurden 60 männliche Tiere der gleichen Linie und des gleichen Alters im Makrolon®-Käfig des Typs II lang mit einer Flussrate von 8l/min getötet. Auch diese Tiere waren paarweise untergebracht. Der Tötungsvorgang wurde bei je 20 Tieren nach 45, 90 bzw. 135 Sekunden abgebrochen. Beide Tiere eines Käfigs wurden kurz nacheinander dekapitiert und das Blut aufgefangen. Die Hälfte der Tiere jeder Gruppe war mit Diazepam oral vorbehandelt worden, um als Kontrollgruppe zu fungieren. Das Blut wurde hinsichtlich des ACTH- und Corticosterongehaltes analysiert. Wird das Verhalten im Kontrollzeitraum dem Verhalten während der Tötung unabhängig von der Flussrate gegenübergestellt, zeigte sich, dass sowohl im Käfigtyp III als auch im Käfigtyp II lang das belastung-indizierende Verhalten abnahm. Es wurde keine Veränderung in Abhängigkeit von der Flussrate beobachtet. Die Analyse von ACTH im Plasma zeigte einen signifikanten Anstieg der Werte über die Zeit sowohl mit als auch ohne Sedation. Sedierte Tiere wiesen nach 45 Sekunden signifikant niedrigere Plasma-ACTH-Werte auf als nicht sedierte Tiere. Die Analyse von Corticosteron im Plasma zeigte bei sedierten Tieren einen tendenziellen Anstieg über die Zeit. Bei nicht sedierten Tieren sank Corticosteron im Plasma dagegen über die Zeit signifikant ab. Sedierte Tiere hatten nach 90 Sekunden und nach 135 Sekunden signifikant höhere Corticosteronwerte als nicht sedierte Tiere. Die Methode der Erfassung der Stresshormone stellte sich als ungeeignet heraus. Die Tötung von Labormäusen mit Kohlenstoffdioxid ist aufgrund der Verhaltensbeobachtungen als tierschutzgerecht zu beurteilen. Für die in den Untersuchungen dieser Arbeit eingesetzte Methode, zeigt sich für Makrolon®-Käfige des Typs II lang eine Flussrate von 6l/min als am besten geeignet. Für Makrolon®-Käfige des Typs III empfiehlt sich eine Flussrate von 13l/min.